🔄 常用离心力与转速换算表
不同转子半径下 g 力与 rpm 的换算表，附细胞离心、裂解物离心、质粒提取等常见应用推荐转速。
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按字段标注的单位输入数值；序列类工具仅支持 `A / T / C / G`。
工具说明
适用场景
离心是分子生物学和细胞培养最常见的操作，但不同离心机转子的半径差异很大，相同 rpm 下产生的相对离心力（g）可以相差数倍。 本表基于标准公式 g = 11.17 × r × (n/1000)² 计算不同转子半径下常用 g 力对应的 rpm，并附常见应用场景的离心参数，适合在配液、细胞收集、核酸提取、蛋白沉淀时直接对照查阅，避免因转速换算错误导致细胞丢失或裂解不完全。
参数速查表
换算公式：g = 11.17 × r × (n / 1000)²，其中 r 为离心半径（cm），n 为转速（rpm）
| 离心管半径 r (cm) | 1500 g 对应 rpm | 3000 g 对应 rpm | 5000 g 对应 rpm | 10000 g 对应 rpm | 15000 g 对应 rpm |
|---|---|---|---|---|---|
| 5（微量管 mini） | 5180 | 7330 | 9460 | 13380 | 16390 |
| 7 | 4380 | 6190 | 8000 | 11310 | 13850 |
| 8 | 4100 | 5790 | 7480 | 10580 | 12960 |
| 10 | 3660 | 5180 | 6690 | 9460 | 11590 |
| 12 | 3350 | 4730 | 6110 | 8640 | 10580 |
| 15（标准转子） | 2990 | 4230 | 5460 | 7730 | 9460 |
| 20（大转子） | 2590 | 3660 | 4730 | 6690 | 8190 |
| 25（超大型转子） | 2320 | 3280 | 4230 | 5980 | 7330 |
常见应用场景推荐转速
| 应用场景 | 推荐 g 力 | 推荐时间 | 离心管 | 注意事项 |
|---|---|---|---|---|
| 细胞离心收集 | 200–300 g | 5 min | 15 mL/50 mL 离心管 | 离心力过大损伤细胞；4 °C 离心保活 |
| 裂解物离心去沉淀 | 12000–16000 g | 10–15 min | 1.5 mL EP 管 | 4 °C 离心防止蛋白降解 |
| 质粒提取（沉淀回收） | 12000 g | 1–2 min | 1.5 mL EP 管 | 短时高速，弃上清需彻底 |
| 沉淀 DNA（乙醇沉淀） | 12000 g | 10 min | 1.5 mL EP 管 | 4 °C 离心；沉淀呈透明薄层需小心吸取上清 |
| 细胞碎片离心（超声后） | 10000–12000 g | 10 min | 1.5 mL/15 mL | 4 °C；保留上清含可溶蛋白 |
| 红细胞裂解后离心 | 300–400 g | 5 min | 15 mL 离心管 | 低速收集有核细胞，避免红细胞碎片污染 |
使用注意
- 离心机说明书标注的 r_max（最大半径）是换算基准；不同转子半径不同，相同 rpm 下 g 力差异可达 2–3 倍，文献和试剂说明书给的参数以 g 为准，不要直接照搬 rpm。
- 低速离心（< 3000 g）对温度不敏感，可用室温；高速和超速离心（> 10000 g）摩擦生热明显，需预冷至 4 °C 并使用冷冻离心机。
- 细胞离心收集务必控制 g 力：200–300 g 是常规范围，> 500 g 会造成机械损伤影响后续培养和流式检测；贴壁细胞消化后离心用 200 g，悬浮细胞用 250–300 g。
- 离心管装载需配平：差值 < 0.1 g；EP 管对称放置，盖子朝外朝内要一致；不平衡会导致转子晃动、噪音增大，严重时损坏离心机。
- 乙醇沉淀 DNA 后的离心方向决定沉淀位置：通常沉淀在离心管外侧底部；吸上清时从对侧小心吸取，避免吸走不可见沉淀。
- 超高速离心（> 15000 g）后开盖需缓慢，避免沉淀悬浮；微量管高速离心后建议短暂 spin（2–3 s）让管盖残留液体回落。
- 普通离心机 ≠ 冷冻离心机：4 °C 标注的样本在普通离心机内实际温度会升至 20–30 °C，做蛋白和核酸实验务必用冷冻离心机。
常见问题
文献里写 12000 rpm，我的离心机 r = 8 cm，对应多少 g？
代入公式 g = 11.17 × 8 × (12000/1000)² = 11.17 × 8 × 144 = 12868 g，约 12870 g，基本对应 12000 g 量级。如果文献作者用的是 r = 10 cm 的转子，12000 rpm 实际是 16085 g，相差 25%。所以看到 rpm 必须先查清作者用的转子半径，不能直接照搬。本表可快速反查：r = 10 cm 对应 10000 g 约 9460 rpm、对应 15000 g 约 11590 rpm。
细胞离心为什么必须用 200–300 g，不能用 1000 g？
细胞是软的，g 力过高会造成机械剪切和膜损伤。200–300 g 是让细胞沉到底部同时保持活性的最优区间；超过 500 g 后流式检测会发现凋亡信号升高、贴壁细胞复苏后铺展变慢；> 1000 g 细胞膜破损明显，胞内蛋白泄漏。原代细胞、干细胞更敏感，建议用 200 g。可参考 细胞复苏后死亡排查。
乙醇沉淀 DNA 后看不到沉淀，是不是离心没到位？
DNA 沉淀常透明，尤其在低浓度（< 100 ng/μL）时几乎不可见。确认方法：离心后管底朝向自己，用枪头从对侧吸上清；保留底部 20–30 μL，加 70% 乙醇洗涤后再离心；最后晾干加 TE 溶解，测浓度确认回收。离心力不够确实会导致小片段 DNA 回收率低，建议 12000 g、10 min、4 °C 离心，片段 < 100 bp 需提到 15000–20000 g。可参考 DNA 提取指南。
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