📏 样品上样量计算

适用场景

样品上样量计算适合 DNA 凝胶、电泳前样品准备、蛋白上样和与 loading buffer 的比例换算。

输入说明

• 样品浓度：当前样品浓度
• 目标上样量：希望最终上样的质量
• Loading buffer 比例：如 6×

计算逻辑

页面会先反推达到目标质量所需的样品体积，再根据 loading buffer 倍数计算应补多少 buffer 和最终总体积。

计算公式

样品体积：

样品体积 = 目标上样量 ÷ 样品浓度

Loading buffer 体积：

Loading buffer 体积 = 样品体积 ÷ (buffer 倍数 - 1)

最终总体积：

总体积 = 样品体积 + Loading buffer 体积

示例

如果你希望上样 500 ng DNA，样品浓度是 100 ng/µL，并使用 6× loading buffer，就能快速得到样品体积和 buffer 体积。

注意事项

• 对比较实验结果的项目，尽量让每个泳道上样量一致
• 如果样品体积过大，需要先重新浓缩样品，而不是一味增加泳道体积

常见错误

• 把目标上样量和目标上样体积混在一起
• 忘记 loading buffer 也会增加最终上样体积
• 样品浓度单位不一致，比如把 µg/µL 当成 ng/µL 输入
• 泳道体积有限时仍强行增加样品体积，导致条带拖尾或扩散

常见问题 FAQ

样品体积算出来太大怎么办？

先不要直接把全部体积加进泳道。可以考虑浓缩样品、降低目标上样量，或者重新评估胶孔容量。若正在排查“PCR 没有条带”，也要同步确认模板本身是否真的有产物。

DNA 凝胶和蛋白电泳能用同一个公式吗？

体积换算逻辑类似，但上样目标不同。DNA 常按 ng 或条带观察需求控制，蛋白常按 µg 控制，且 buffer 配方、变性条件和泳道容量不同。

上样量一致，条带强度还是不一致正常吗？

不一定说明计算错了。样品纯度、染料结合、扩增产物长度、蛋白转膜效率都会影响最终信号，可以结合 核酸电泳条带弥散 或 Western blot 相关排查继续判断。