BioHelper
可以问实验排错、实验计算,也可以让我基于站内内容查找资料并给出引用。
快速计算 PCR 反应体系中的 buffer、引物、模板和酶体积。
按字段标注的单位输入数值;序列类工具仅支持 `A / T / C / G`。
这个工具用于配置常规 PCR 或 qPCR 反应体系,尤其适合 20 µL、25 µL、50 µL 这类高频体系。
当你想快速核对 buffer、引物、模板和酶的加入体积时,它比手动算更省错。
页面会先根据 buffer 倍数反推 buffer 用量,再把各组分总和从总体系体积中扣除,自动得到补水体积。
配置 20 µL PCR 体系 时,可以快速得到:
5%-10% 损耗因为补水量本来就是由其它组分体积反推得到的。模板、引物、酶和 buffer 中任何一个参数变化,补水体积都会变化。
多数情况下是按比例放大,但前提是目标终浓度和模板输入策略不变。若你正遇到 PCR 条带很淡 或 PCR 没有条带,不要只放大体积而不重新检查浓度设计。
体系计算只能保证体积关系正确,不能替代引物设计、模板质量和程序优化。建议结合 引物退火温度计算 和对应排查文章一起看。
Ct 值长期偏高往往意味着模板输入不足、扩增效率下降或体系受到抑制。
在同一反应管中进行多个基因的扩增时,部分基因信号明显减弱或完全消失。
有条带但很淡,多数提示扩增量不足,应优先检查模板量、退火温度和循环条件。
某些 DNA 模板具有复杂的二级结构,需要添加 DMSO 等添加剂才能正常扩增,但效果不稳定。
Marker 正常说明跑胶系统大概率没问题,应优先回到模板、引物、体系和循环条件。
qPCR 无扩增或 PCR 无条带,多由模板、引物、体系或程序造成。
如果当前工具没有覆盖你的参数、样品类型或异常现象,可以把具体实验条件发过来,后续优先补成模板或排查页。