🧪 稀释计算器

适用场景

稀释计算器适合 DNA、RNA、蛋白、引物、抗体和常见小分子储备液的日常配液。
如果你脑子里想到的是 C1V1=C2V2，这个页面就是最直接的换算入口。

输入说明

• 原液浓度：当前储备液的起始浓度
• 目标浓度：希望得到的最终工作浓度
• 目标体积：最终总体系体积

计算公式

核心公式为 C1 × V1 = C2 × V2。
页面会自动给出：

• 需要吸取的原液体积 V1
• 需要加入的稀释液体积 V2 - V1
• 最终稀释倍数 C1 / C2

示例

例如把 1000 ng/µL 的 DNA 稀释到 50 ng/µL，并配置 950 µL 工作液，就可以直接得到原液与补液体积。

注意事项

• 目标浓度必须低于原液浓度
• 输入单位要前后一致
• 如果是高盐或含甘油样品，建议记录实际体系成分，避免只算浓度不看基质差异

常见问题 FAQ

C1V1=C2V2 什么时候不能直接用？

当样品并不是单纯稀释，而是还涉及盐浓度、pH、甘油比例或多组分母液变化时，不能只用一个浓度公式判断全部条件。

DNA 稀释到上机浓度时，为什么还要看模板质量？

因为浓度对了不代表模板完整。遇到“PCR 没有条带”或“模板质量异常”这类问题时，模板本身的降解和抑制物同样会影响结果。

稀释后条带还是太弱，说明公式算错了吗？

不一定。也可能是原液浓度本身估高、上样量不足，或者产物量本来就低。可以结合 上样量计算 和相关文章一起判断。

qPCR 的 cDNA 要稀释到什么浓度上机

qPCR 对 cDNA 模板量有最佳窗口：太少则 Ct 偏高、重复性差，太多则可能因反转录体系残留的盐或抑制剂导致扩增受抑。 常见做法是把反转录产物稀释 5-10 倍后上机，对应总 RNA 等价约 1-10 ng/反应。稀释时优先用无核酸酶水或 1× TE，避免引入抑制剂。 如果只用了 oligo(dT) 反转录，低丰度基因可能需要更少稀释；随机引物+oligo(dT) 体系的 cDNA 浓度均匀性更好，按体积稀释即可。模板量与 Ct 的关系参考 qPCR 每孔加多少 cDNA。

ELISA 标准品怎么做系列稀释

ELISA 标准品通常需要从高浓度母液做倍比稀释（如 2 倍或 3 倍系列），覆盖预期样品浓度区间。关键点：

• 每一步都要换吸头，避免高浓度残留污染低浓度孔。
• 稀释倍数要和标准曲线点数匹配：2 倍稀释适合窄范围高分辨率，3 倍稀释适合宽范围。
• 用样品基质（如空白血清、空白裂解液）稀释标准品可以校正基质效应，比单纯用水或缓冲液更贴近真实样品行为。

系列稀释的倍数和体积规划可以用 系列稀释计算器 辅助。标准曲线点数和布局参考 ELISA 标准曲线点位布局。