术语解释

什么是 Bradford 定量:术语解释

Bradford 定量是基于考马斯亮蓝 G-250 与蛋白结合后颜色由棕变蓝的比色蛋白浓度测定方法。

更新于 2026-09-04 2 分钟
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什么是 Bradford 定量

Bradford 定量是一种快速比色蛋白浓度测定方法,原理是考马斯亮蓝 G-250 染料在酸性条件下与蛋白结合后,吸收峰从 465 nm(棕红色,游离态)移至 595 nm(蓝色,结合态),OD₅₉₅ 升高与蛋白浓度成正比。Bradford 试剂直接与样品按 1:50(v/v)混合,室温孵育 5 分钟后读 OD₅₉₅,用 BSA 或 IgG 标准曲线(0–2000 µg/mL)反算浓度。整个过程 10 分钟内完成,是 Western blot 上样前定量、蛋白纯化过程中跟踪浓度最常用的快速方法。

实验中为什么重要

Bradford 法相比 BCA 法的优势在于速度快(5 min vs 30 min)、对还原剂耐受(DTT、β-巯基乙醇 <1 mM 不干扰)、对去垢剂部分兼容(Triton X-100 <0.05%、SDS <0.01%)。但其核心短板也是去垢剂敏感:含 0.1% SDS 的细胞裂解液直接测 Bradford 会发生沉淀或显色异常,需改用 BCA 或稀释样品。Bradford 对不同蛋白响应差异大(BSA 与 IgG 在同浓度下 OD₅₉₅ 差 1.5–2 倍),标准品蛋白类型应与样品类型尽量一致:测抗体用 IgG 标准曲线,测细胞总蛋白用 BSA 标准曲线。碱性缓冲液(Tris pH >8.5)会提升背景,需做缓冲液对照扣减。

常见误区

  1. 测含 SDS 裂解液不稀释:0.1% SDS 即显著干扰,必须稀释 10 倍以上或改用 BCA。
  2. 标准品与样品蛋白类型不匹配:用 BSA 标准曲线测抗体浓度,结果被低估约 30%。
  3. 孵育时间不一致:5 min 与 15 min 的 OD₅₉₅ 漂移可达 10%,所有孔需同步读板。
  4. 染料沉淀误读:样品含去垢剂时染料-蛋白复合物析出,OD 异常偏高,需离心后取上清读板。

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