快速判断
先确认这 4 件事
最可能原因
胶长时间不凝固、胶体过脆易碎、孔底漏胶或胶内气泡,导致跑胶结果异常甚至无法上样。 先从最容易验证的对照和关键步骤开始排查。
怎么确认
比较正常对照、异常样本和重复孔,确认异常是单点问题还是整批问题。
立刻处理
先用最小改动复现实验,逐项替换样本、试剂、仪器设置或操作条件。
下次避免
把异常现象、批次、关键参数和处理方式记录下来,方便下次快速定位。
问题描述
制胶过程中或跑胶时出现以下情况:
- 胶液放置 30 分钟以上仍不凝固,呈液态或半流动状态;
- 胶凝固后很脆,取胶或搬动时容易开裂;
- 上样孔底部漏液,样品从孔底流失;
- 胶内可见气泡,跑出的条带出现变形或断裂;
- 同一浓度配出的胶,分离效果每次不一致。
原因分析
1. 缓冲液浓度错误
- 误用 10× 或其他倍数母液直接配胶,离子强度过高;
- 母液稀释比例算错,实际浓度偏离 1×;
- 缓冲液存放过久、有沉淀或长菌。
2. 琼脂糖本身问题
- 琼脂糖受潮结块或超过有效期;
- 称量不准,实际浓度与目标值偏差较大;
- 不同品牌/批次的凝胶强度差异。
3. 溶解与操作问题
- 加热溶解不完全,溶液中仍有颗粒;
- 加热过程蒸发的水分未补回,实际浓度偏高;
- 灌胶速度过快产生气泡;
- 冷却温度不足就倒胶,或冷却过度导致胶液开始凝固。
4. 梳子与凝固条件
- 梳齿完全贴底,孔底过薄导致漏液;
- 凝胶未完全凝固就拔梳子,撕裂孔壁;
- 低浓度胶凝固时间不足。
5. 胶浓度与用途不匹配
需要分离小片段时使用了过低浓度,或高浓度胶用于大片段,表现为分离效果差。
解决方案
1. 按现象对应处理
| 现象 | 主要原因 | 处理方式 |
|---|---|---|
| 长时间不凝固 | 缓冲液用了母液、琼脂糖失效 | 改用 1× 工作液,更换新琼脂糖 |
| 胶体过脆 | 浓度过高、离子强度异常、凝固不足 | 降低浓度,延长凝固时间 |
| 孔底漏胶 | 梳齿贴底太紧 | 重新插梳子,预留 0.5-1 mm 间隙 |
| 胶内气泡 | 灌胶过快、未消泡 | 灌胶前静置消泡,缓慢连续倒胶 |
| 条带拖尾弥散 | 胶浓度偏低、缓冲液老化 | 提高浓度,更换缓冲液 |
| 条带弯曲 | 电压过高、胶厚不均 | 降低电压,重配缓冲液 |
2. 标准制胶流程
称量琼脂糖 → 加入 1× 缓冲液 → 微波间断加热并摇匀至完全透明
→ 用去离子水补回蒸发体积 → 冷却至约 60°C → 加核酸染料
→ 缓慢灌胶并推走气泡 → 倾斜插梳子(距底 0.5-1 mm)
→ 室温静置 20-30 分钟至完全凝固
3. 配胶量计算
琼脂糖质量(g) = 胶体积(mL) × 浓度(%)
例如 40 mL 的 1% 胶需要 0.4 g 琼脂糖。
4. 浓度选择参考
| 浓度 | 分离范围 | 典型用途 |
|---|---|---|
| 0.8% | 0.5-10 kb | 常规质粒、PCR 产物 |
| 1.0% | 0.25-8 kb | 常规 PCR 产物、酶切鉴定 |
| 1.5% | 0.2-4 kb | 小片段、菌落 PCR |
| 2.0% | 0.1-2 kb | 小片段精细分离 |
预防措施
- 配胶前确认缓冲液已稀释为 1× 工作液;
- 加热后务必用去离子水补回蒸发体积;
- 加热时每 20-30 秒取出摇匀,避免局部过热和溢出;
- 灌胶前静置消泡,缓慢连续地从一角倒入;
- 梳子预留 0.5-1 mm 底部间隙,垂直拔出;
- 凝胶完全凝固(轻触不粘手)再拔梳子;
- 同一份电泳缓冲液使用不超过 2-3 次。
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